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shRNA遺伝子ノックダウンソリューション

VectorBuilderは、RNAi実験のための包括的なshRNAソリューションを提供しています。U6およびmiR30型shRNAベクターのデザインとshRNAベクターを使用したウイルスパッケージングライブラリー構築 スクリーニング、安定細胞株作製までを容易に行うことができます。当社のshRNAサービスは、非常に効率的なワンストップソリューションとして、お客様の機能欠損実験を加速します。

特長

Online vector design studio

高いカスタマイズ性: 全ゲノムshRNAデータベースとシームレスに統合された、直感的なオンラインデザインプラットフォーム

Comprehensiv

包括的:効率的なノックダウンのための豊富なベクターバックボーンコンポーネント、および関連サービスをご提供。

Streamlined

効率的: 実験デザインから安定細胞株の作製ライブラリースクリーニングまでカバーするフルサービス。

Integrated Technical Expertise

専門家によるサポート: 100%配列保証、迅速な納期、競争力のある価格および強力な技術サポート。

提供サービス

当社の脂質ナノ粒子(LNP)カプセル化サービスを利用することで、均一で高いカプセル化効率を持つLNPにsiRNAを容易にパッケージングできます。

VectorBuilderのカスタムshRNAノックダウンソリューションによる研究の効率化

お問い合わせください

デザインのヒント

カテゴリー 推奨事項
shRNAの数 強力で信頼性の高いノックダウンを確実にするために、同じ目的遺伝子(GOI)を標的とする少なくとも3種類の異なるshRNAをテストしてください。
プロモーターの選択
  • 頑強にshRNAを発現できるU6プロモーターは、最も広く使用されています。
  • RNA Pol IIプロモーター(組織特異的プロモーターや誘導型プロモーターなど)を使用してshRNAを発現のする必要がある場合、あるいは複数のshRNAの共発現(目的遺伝子の複数の領域を標的とする場合や、複数の目的遺伝子を標的とする場合など)を希望する場合は、miR30システムを使用する必要があります。
標的領域
  • shRNAで3' UTRを標的とすることは、コーディング領域を標的とすることと同様に効果的です。
  • 転写バリアント特異的なノックダウンを行うには、標的領域を慎重に選択してください。
一般的な推奨事項 miR型のshRNAベクターは柔軟性がありますが、U6型shRNAベクターは一貫してより強力なノックダウンをもたらします。miR型shRNAの特定の機能が必要でない限り、U6型shRNA の使用を推奨します。

技術情報

shRNA遺伝子ノックダウン
shRNA発現制御
shRNAデータベース

RNA干渉(RNAi)は広く用いられている遺伝子調節法であり、目的遺伝子のRNAに相補的な短いRNA配列(約21〜23ヌクレオチド)を標的細胞に導入します。導入RNAと相補的な内因性mRNAが結合して形成された二本鎖RNAが細胞によって分解された結果、翻訳が阻止されて遺伝子発現が減少します。この方法では、未結合のmRNAが機能性タンパク質を産生し続けるため、遺伝子を完全にノックアウトすることはありません。

一般的に使用されるRNAiには、ショートヘアピンRNA(shRNA)と小分子干渉RNA(siRNA)の2つがあります。shRNAはDNAにコードされたヘアピン構造で、高い安定性を持ち長期的なノックダウンを可能にします。一方、siRNAは短鎖の合成RNAであり、細胞に直接導入されて一過性のノックダウンを行います。siRNA法と比べていくつかのメリットがあるため、ほとんどのRNAi用途ではshRNAによる遺伝子ノックダウンが好まれています。

shRNAは、ウイルスまたは非ウイルス性のDNAベクターを用いて標的細胞に導入できます。細胞にshRNAベクターをトランスフェクションまたはトランスダクションすると、核内でshRNAが転写され、ノックダウン標的mRNAと同じ配列のセンス鎖(図1のピンクの鎖)、それに続く一本鎖のループ、およびセンス鎖に相補的なアンチセンス鎖(図1の青緑の鎖)からなるヘアピン構造が形成されます。転写されたshRNAは核を出て、細胞質でDicerによってプロセシングされた後、RNA誘導サイレンシング複合体(RISC)に取り込まれ、標的mRNAの認識と分解が行われます(図1)。

Production and function of forms of RNAi.

図1. RNAiの生成および機能。

ベクターからのshRNA発現制御には、2つのアプローチが広く用いられています。U6型のshRNA発現とmiR型のshRNA発現です。U6型のshRNAベクターは、U6などのRNAポリメラーゼIIIプロモーターによって転写されるシンプルなステムループ構造のshRNAを発現させます。一方、miR型のshRNAベクターは、RNAポリメラーゼIIプロモーターの下でマイクロRNAスキャフォールド(骨格)を適用したshRNAを発現させるために使用されます。U6型とmiR型のどちらのshRNAも、細胞質内では同様のメカニズムでプロセシングされ、最終的に標的遺伝子のサイレンシングに至ります。しかし、miR型のshRNAはU6型のものとは異なり、構造内に内因性miR由来の配列が含まれているため、核内で転写された後にプライマリーmiRNAと同様のメカニズムでプロセシングされます(図2)。

Difference between U6-based and miR-based shRNA mediated gene expression knockdown in nucleus.

図2. U6およびmiR型のshRNAによる遺伝子発現ノックダウンメカニズム。

miR型のshRNAベクターでは、RNAポリメラーゼIIプロモーターを使用することで、組織特異的、誘導型、または強い/弱い活性をもつプロモーターの利用が可能になり、ユビキタスなU6プロモーターでは不可能な実験用途に対応できます。さらに、miR型のshRNAシステムにおいてPol IIプロモーターが長い転写産物を効率的に産生できることは、他のノックダウンベクターシステムに対していくつかのメリットをもたらします。複数のshRNAmiRを単一のポリシストロンとして転写し、細胞内でプロセシングして複数の成熟shRNAを形成させることができます。これにより、単一のベクターを使用して複数の遺伝子をノックダウンしたり、同一遺伝子内の異なる領域を標的にしたりすることが可能になります。また、このシステムでは、ユーザーが選択した遺伝子をshRNAmiRと同じポリシストロン内に配置できます。図4に示すように、マーカー遺伝子を使用すればこのマーカーをshRNA転写の直接的なモニタリングに使用できます。また、ORFとshRNAの共発現を必要とする別用途に利用することも可能です。図3はU6型とmiR型のshRNAシステムの実験を比較しています。薬剤選択の前後のいずれにおいても、ノックダウン効率はmiR型システムで一つ以上のshRNAを使用した場合よりも、U6型システムの方が高くなります。

下の表は、U6型およびmiR型shRNAベクターシステムをまとめたものです。

カテゴリー U6型shRNAベクター miR型shRNAベクター
shRNA構造 シンプルなステムループshRNA マイクロRNAスキャフォールドを適用したshRNA
shRNA長 50-70 nt >250 nt
プロモーター U6やH1などのRNA Pol IIIプロモーター ユビキタス、組織特異的、誘導型を含むRNA Pol IIプロモーター
shRNAプロセシング機構 細胞質でDicerのみによってプロセシングされる 核内でDrosha、細胞質でDicerによってプロセシングされる
単一ベクターから発現可能なshRNAの数 通常は単一のshRNA 単一または複数のshRNA
shRNA転写産物内での他ORF発現 不可 可能
遺伝子ノックダウン効率 多くの場合、より強力 多くの場合、より低い
毒性 細胞毒性が高い 細胞毒性が低い

VectorBuilderのデザインプラットフォームでは、オンラインshRNAデザインツールに搭載されたアルゴリズムを利用して、効果の高いshRNAベクターをデザインできます。このツールは主要な種に最適化されたshRNAデータベースを備えており、標的遺伝子に対して高いノックダウン効率を持つshRNAをデザインできます。shRNAのデザインにあたっては、RNAiコンソーシアムで使用されているものと同様のルールを適用しています。各RefSeq転写産物に対し、標的候補部位となり得るすべての21merを探索します。4連続以上の同一塩基、7連続以上のGまたはC塩基、GC含有率が25%未満または60%超、5'末端のAAなど、ノックダウン効率や特異性、あるいはクローニング難易度を上昇させると考えられる特徴を持つ候補は除外されます。すべてのスコアは0以上で、平均は約5、標準偏差は約5、95%のスコアは15以下になります。ノックダウンスコアが~15のshRNAは、最高のノックダウン性能とクローニング適性を持つと予測され、スコア0のshRNAは、ノックダウン性能が最低であるかクローニングが困難であると予測されます。

VectorBuilderのshRNAデザインツールでは、データベースから標的遺伝子を検索できます。遺伝子名を入力すると、データベース内の遺伝子を標的とするすべてのshRNAの詳細情報が表示されます。これには、shRNA配列や全トランスクリプトアイソフォームを確認するためのUCSC Genome Browserへのリンクも含まれます。またデータベースは標的遺伝子に対するすべてのshRNAをノックダウンスコアの高い順にランク付けし、上位3つの推奨shRNAを提示します。なお、ノックダウンスコアはあくまで理論上の指標です。実際のノックダウン効率は予測スコアと大きく異なる場合があるため、スコアの低い標的部位でも良好に機能する可能性があります。

参考文献

Mol Cell. 9:1327 (2002); Characterization of miR30-based gene knockdown.

Nucleic Acids Res. 34:e53 (2006); Development of miR155-based shRNA vectors.

J Gene Med. 9:620 (2007); Development of IPTG-inducible gene knockdown system.

Proc Natl Acad Sci USA. 101:10380 (2004); Development of Cre-lox-regulated gene knockdown system.

Case Studies

U6およびmiR30型のshRNAシステム
誘導型shRNAシステム

誘導型shRNAシステムは、多種多様な哺乳類細胞において、精密かつ時間的に制御された標的遺伝子のノックダウンを可能にします。これらのshRNAは、テトラサイクリン型またはIPTG型のメカニズムのいずれかで制御できます。

リソース

FAQ

siRNAによるノックダウンと比較して、shRNAによるノックダウンの主なメリットは何か?

2つの手法の詳細な比較を下の表にまとめました。

shRNAによるノックダウン siRNAによるノックダウン
導入方法 ベクターの種類に応じたトランスフェクションまたはトランスダクション トランスフェクション
ノックダウンの持続期間 長期的 一過的
エピソーマルまたは安定的組み込み 導入方法に応じてエピソーマルまたは安定的のどちらも可能 エピソーマル
選択マーカーの追加機能 可能(蛍光または薬剤選択マーカーを追加可能) 不可
対応可能な細胞種 幅広い細胞種に最適 トランスフェクション効率が高い細胞のみに限定
オフターゲット効果 低い 高い
分解速度 低い 高い
shRNAによるノックダウンと、CRISPRやTALENによるノックアウトのメリットとデメリットは何か?

目的遺伝子の機能欠失の影響を研究する場合、shRNAによるノックダウンとヌクレアーゼによるノックアウト(CRISPRやTALENなど)のどちらも有用な実験手法となり得ます。特定の用途に最適な手法を決定するために、考慮すべき点がいくつかあります。

メカニズム

  • ノックダウンベクター:ノックダウンベクターは、ショートヘアピンRNA(shRNA)を発現させ、標的mRNAの分解を誘導し翻訳を抑制することで、標的mRNAの機能を抑制します。。shRNAノックダウンベクターは、目的遺伝子のDNA配列変化を伴いません。
  • ノックアウトベクター:CRISPRとTALENはどちらも、ヌクレアーゼを特定の標的ゲノム配列に誘導して切断します。これらの切断は細胞の修復機構によって不完全に修復された結果、修復部位に小さな挿入や欠失などの恒久的な変異が生じます。これらの変異の一部は、フレームシフトや早期終止コドンなどを引き起こし、目的遺伝子の機能欠失をもたらします。ゲノム上の近接した2つの切断部位(数kb以内)を同時に標的にすると、その中間領域を欠失させることも可能です。

有効性

shRNAによるノックダウンでは、標的遺伝子の発現を完全に抑制することはできません。最も効果的なshRNAであっても、標的遺伝子の発現が一部残存します。対照的に、CRISPRやTALENでは、導入細胞の一部において、恒久的に遺伝子機能を完全に喪失させることが可能です。

一貫性と均一性

shRNAベクターは一般に、導入細胞集団内での細胞間の均一性が高く、実験間でも非常に一貫した結果をもたらします。対照的に、CRISPRやTALENでは導入される変異の確率的な性質により、細胞間で非常に不均一な結果が生じます。細胞内で目的遺伝子を完全にノックアウトするには、細胞内の遺伝子のすべてのコピーを破壊する必要があります。正常な細胞は(XまたはY染色体上の遺伝子を除き)すべての遺伝子を2コピー持ち、がん細胞では2コピー以上持つ場合があるため、完全にノックアウトされた細胞は導入細胞全体の極めてわずかな割合にとどまる可能性があります。このため、CRISPRやTALENによるノックアウト実験では、目的遺伝子のすべてのコピーが破壊されている個体(クローン)を特定するために、配列解析によるスクリーニングが必要になります。

オフターゲット効果

オフターゲット効果は、shRNAによるノックダウンとCRISPRやTALENによるノックアウトの両方で報告されています。オフターゲットによる表現型は、同じ遺伝子に対して複数の異なるshRNAを使用することで推定できます。複数の異なるshRNAによるで遺伝子ノックダウンが、一貫した表現型を示すのであれば、その表現型がオフターゲット効果である可能性は低くなります。CRISPRやTALENによるノックアウトでは、オフターゲット変異に起因する表現型の可能性を考慮し、機能欠失変異を持つ複数のクローンを解析する必要があります。さらに、バイオインフォマティクスによって特定されたオフターゲット部位の配列を確認し、変異が導入されていないかを検証することも可能です。

オンラインで相同組み換え用ドナーベクターをデザインする
shRNAで目的遺伝子がノックダウンできていない

すべてのshRNAが機能するわけではありません

当社の経験とお客様からのフィードバックに基づくと、任意の遺伝子に対して3〜4種類のshRNAをテストした場合、通常2〜3種類が良好なノックダウン効果を示します。しかし、shRNAを使用する際には、すべてのshRNAが機能するわけではないという事実を認識することが重要です。一般的に、顕著なノックダウン効果を示すshRNAは約50〜70%であり、そのうち強力な効果を持つものは約20〜30%です。特定の遺伝子を標的とするshRNAを数種類試した際、偶然にも満足のいく結果が得られない可能性があります。このような場合は、さらに追加のshRNA、特に文献等で検証済みのものを試すのが最善のアプローチです。また、同じ遺伝子を標的とする複数のshRNAの「カクテル」(混合物)を使用することで、ノックダウン効率が向上することもあります。

ノックダウン検証用のアッセイが適切に実施されていない

shRNAのノックダウン効率を評価するための最も一般的で感度の高いアッセイはRT-qPCRです。場合によっては、数組のプライマーペアを試し、最も特異的で効率的なペアを選択する必要があります。一般的に、ゲノムDNAの増幅を避けるため、RT-qPCRプライマーは可能であればエキソン-エキソン接合部を跨ぐように設計すべきです。新しいプライマーペアを使用する際は、PCR産物をアガロースゲル電気泳動で確認してバンドを検証するか、さらにはシーケンス解析で産物を検証することをお勧めします。ゲノムDNAコンタミネーションレベルを正確に把握するために、RT-qPCRでは常にマイナスRTコントロールを含める必要があります。当社のプライマーデザインツール</aを使用して、プライマーの品質をin silicoで事前確認することもできます。

ノックダウン効率はウェスタンブロットでも評価可能です。しかし、ウェスタンブロットは抗体の非特異的結合による偽陽性バンドが生じやすいことで知られており、誤ってノックダウン効果がないと判断される原因になります。使用する抗体が目的遺伝子に対して真に特異的であることを確認するよう、十分な注意が必要です。

shRNAが遺伝子の一部のトランスクリプトアイソフォームしか標的にしていない

shRNAをデザインする際、特定のアイソフォームに限定したノックダウンを目的とする場合を除き、可能な限り多くのトランスクリプトアイソフォームを標的にできるものを選択することを推奨します。VectorBuilderは主要種に最適化されたshRNAデータベースを構築しています。VectorBuilderでshRNAベクターをデザインする場合、データベースから標的遺伝子を検索して、shRNAをベクターに挿入します。検索を行うと、当社が設計したすべての利用可能なshRNAの詳細情報が表示され、ゲノム配列や全トランスクリプトアイソフォームとの関係を確認するためのUCSC Genome Browserへのリンクも含まれます。

主な引用文献

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