Vector Systems
RCAS発現ベクター
概要
RCAS(Replication-Competent Avian Sarcoma-Leukosis Virus long terminal repeat with a Splice acceptor)レトロウイルスベクターは、ラウス肉腫ウイルス(RSV)に由来します。野生型RSVは、すべての必須ウイルス遺伝子と癌遺伝子srcを保持しています。RCASベクターでは、srcスプライス部位を維持したままsrc癌遺伝子を欠失させ、目的のトランスジーンに置き換えています。これにより、ウイルスの長い末端反復配列(LTR)によって駆動されるスプライシングされたウイルス転写産物から、挿入された遺伝子を発現させることが可能になります。その結果、RCASベクターは適切な鳥類細胞において複製能を維持し、適切なウイルス受容体を発現するように改変された哺乳類細胞に感染することができます。
当社のRCAS発現ベクターRCASBP(A)は、サブグループA(TVA受容体)へのエンベロープ特異性を持つBryan Polymerase(BP)株に基づいた派生型です。RCASBP株は、RCASと比較して鶏細胞においてより高い複製効率を示すことが証明されています。このベクターでは、野生型RSVのpol遺伝子が、高タイターなBryan株のpol遺伝子に置き換えられており、ウイルス産生能が強化されています。一般にレトロウイルスの感染には、ウイルス表面のエンベロープ糖タンパク質と、ターゲット細胞表面の対応する受容体(TVA)との特異的な相互作用が必要です。鳥類肉腫・白血病ウイルス(ASLV)ファミリーの5つの主要なエンベロープ・サブグループの中で、サブグループAは細胞毒性が低く、ウイルス標値(タイター)が高いため、最も頻繁に使用されます。原代鶏胚線維芽細胞、不死化鶏胚線維芽細胞(DF-1)、ウズラ線維芽細胞株(QT6またはQT-35)は天然にTVAを発現しており、サブグループAのウイルスに感染します。対照的に、哺乳類細胞は内因性TVAを欠いているため、RCASBP(A)を感染させるにはこの受容体を発現するように遺伝子改変を行う必要があります。
受容体を介した侵入後、RCASBP(A)はRNAゲノムの逆転写を行い、生じたプロウイルス・トランスジーンDNAをホスト細胞のゲノムに安定して組み込みます。許容性のある鳥類細胞においては複製能を持つため、ヘルパーシステムを必要とせず、細胞間伝播を通じてウイルス産生が増幅されます。これは鳥類胚モデルにおいて特に強力であり、局所的な感染によって空間的・時間的に制御された遺伝子発現を可能にし、神経パターニングや四肢形成などの発生プロセスのin vivo研究に寄与します。
哺乳類システムにおいて、RCASBP(A)ベクターはTVA発現細胞やトランスジェニックマウスモデルと組み合わせて使用され、高度に標的化された遺伝子導入を実現します。哺乳類細胞ではウイルスの複製は制限されますが、安定したゲノム組み込みにより、癌遺伝子、癌抑制遺伝子、またはレポーター遺伝子の持続的な発現が可能になります。RCAS-TVAシステムは、神経膠腫(グリオーマ)、肉腫、上皮性癌の研究など、腫瘍の発生、進行、遺伝的相互作用をin vivoでモデル化するために腫瘍学研究で広く応用されています。感染を特定の細胞集団に限定することで、RCASBP(A)はオフターゲット効果を最小限に抑えながら精密な遺伝子操作を可能にします。
このベクターシステムの詳細については、以下の論文をご参照ください。
| 文献 | トピック |
|---|---|
| Folia Biol. (Praha) 50(3-4): 107-119. (2004) J Virol. 61(1): 3004-3012. (1987) |
Extensive information about the RCAS vector system. |
| Neural Dev. 7: 22. (2012) Dev. Dyn. 238(4): 797-811. (2009) |
Application of the RCAS vector system for developmental biology and gene function research. |
| Discoveries (Craiova) 4(2): e58. (2016) Cold Spring Harb. Protoc. 2014(11): 1128-1135. (2014) |
Applications of the RCAS vector system for oncology research. |
特長
本ベクターシステムは、適切な鳥類システムおよびTVA改変哺乳類システムへの安定かつ効率的なトランスジーン導入のために最適化されています。機能解析、発生生物学、および癌化経路のモデル化におけるin vitroおよびin vivoアプリケーションのための、堅牢で信頼性の高いシステムを提供します。
実験による検証
当社のRCASベクターは、以下の図1に示すように、TVA発現細胞における特異的かつ効率的な遺伝子発現が検証されています。

図1. RCASベクターシステムを用いたEGFP発現HEK293T-TVA細胞の作製。(A) EGFPをコードするRCASベクターをDF-1細胞にトランスフェクションした。増幅後、RCASビリオンを回収し、野生型またはTVA発現HEK293T細胞に感染させた(MOI = 30)。感染から3日後、フローサイトメトリーを用いてEGFPの蛍光強度を定量した。(B) 感染3日後の代表的な蛍光顕微鏡画像。露光時間:明視野=10 ms、EGFP=100 ms。倍率:100倍。(C) RCAS-EGFPを感染させたHEK293T-TVA細胞では、EGFP発現が約72%増加した。
メリット
ベクターDNAの恒久的な組み込み: 従来のトランスフェクションでは、時間の経過とともにDNAが失われるため、ホスト細胞へのDNA導入はほぼ一過性のものとなります。この問題は、急速に分裂する細胞において特に顕著です。対照的に、レトロウイルスによる形質導入は、カーゴをホストゲノムに組み込むため、遺伝子を恒久的にホスト細胞へ導入することができます。
高い特異性: 当社のベクターはTVAを発現する細胞に特異的に感染するエンベロープ糖タンパク質をコードしており、精密なトランスジーン導入を可能にし、オフターゲット効果を最小限に抑えます。
in vitroおよびin vivoでの有効性: 当社のベクターは、培養鳥類細胞やその他のTVA陽性細胞だけでなく、鶏胚やその他のTVA陽性動物モデルにおいても、トランスジーンを効率的に導入・発現するように設計されています。これにより、in vitroおよびin vivoの両方の研究において効果的なツールとなります。
技術的簡便性: これらのベクターは、ヘルパーシステムや特別な装置を必要とせず、標準的な鳥類細胞株で効率的に製造できるため、全体のコストを抑えることができます。
安全性: 野生型RSVとは異なり、当社のベクターは癌遺伝子srcを欠いているため、癌化のリスクを大幅に低減しつつ、鳥類細胞での複製に必要な必須ウイルス遺伝子を保持しています。
デメリット
非常に限定的な搭載容量: RCASBP(A)ベクターのゲノムサイズは約10 kbであり、目的のDNAを収容できるスペースは残り約2.5 kbのみです。大きなORFがこのサイズ制限を超えると、ウイルスタイターが著しく低下する可能性があります。
鳥類ホスト細胞における複製能: RCASBP(A)ベクターは複製に必要なすべての必須ウイルス遺伝子を含んでおり、鳥類細胞に感染すると、自然に複製して周囲の細胞に広がります。RCASBP(A)はTVA発現哺乳類細胞にも感染しますが、ホスト側のさまざまな制限により複製は非効率的であり、標準的な哺乳類システムでは実質的に非複製型となります。
哺乳類細胞への応用にはTVAの過剰発現が必要: 哺乳類細胞はRCASBP(A)受容体を発現していないため、ウイルスの侵入を可能にするにはTVAの発現が必要です。RCASベクターはTVA陽性哺乳類細胞に効率よく感染してトランスジーンを導入できますが、ホスト特異的な制限により複製は限定的なままとなります。
基本コンポーネント
RSV LTR: ラウス肉腫ウイルス(RSV)の長い末端反復配列。ウイルスゲノムの両端に同じ向きで配置され、プロモーターとポリアデニル化の両方の機能を持ちます。ゲノム上流のLTRは転写を駆動するプロモーターとして機能し、下流のLTRは上流からの転写を終結させるポリアデニル化シグナルとして機能します。
Gag-Pol-Env: それぞれウイルス粒子の組み立てに必要な構造タンパク質(Gag)、複製に必要な酵素(Pol)、およびTVA受容体への指向性を決定するエンベロープ糖タンパク質(Env)をコードします。
Kozak: Kozakコンセンサス配列。真核生物における翻訳開始を促進すると考えられているため、目的のORFの開始コドンの直前に配置されます。
ORF: 目的遺伝子のオープンリーディングフレーム。その発現は5' LTR内の遍在性プロモーター機能によって駆動されます。
Ampicillin: アンピシリン耐性遺伝子。大腸菌においてアンピシリン選択によりプラスミドを保持することを可能にします。
pBR322 ori: pBR322複製起点。大腸菌内でのプラスミド複製を可能にします。
Rop: Repressor of primer。pBR322 oriでの複製開始を制御することで、プラスミドのコピー数を調節します。